и
Техника взятия материала. Патологический материал берут стерильно из свежего трупа. Вырезанные пробы из органов, в которых обнаружены патологоана-томические изменения, помещают в стерильную посуду. Трупы мелких животных лучше посылать целиком в непроницаемой таре. Взятый материал помещают в посуду и заливают 10%-ным раствором формалина. Перед отправкой кишечника его очищают от содержимого кладут в 30—40%-ный водный, раствор глицерина или насыщенный раствор Nad.

Важно выяснить причины и обстоятельства, при которых животное заболело. Для этого ставят примерно следующие вопросы: когда и при каких обстоятельствах заболело животное, какие признаки замечались в начале и-при дальнейшем развитии болезни, нет ли в хозяйстве еще больных с такими же признаками, болело ли животное раньше, какая лечебная помощь оказывалась, кто ее оказывал и т. д.
Непосредственное исследование начинают с наружного осмотра животного.

Аускуль-тацию с помощью инструментов проводят для изучения и оценки тонов сердца, а также для выявления сердечных шумов, возникающих при патологии, например при пороке сердца.
При аускультации сердца прослушивается два звуковых явления, непосредственно связанных с фазами работы сердца. Первый тон (систолический), более громкий, продолжительный, низкий. и постепенно затухающий, связан с фазой систолы сердца;второй тон (ди-астолический), короткий, более высокий, резко обрывающийся на конце, связан с фазой диастолы сердца.

риммунизированного эритроцитами барана. Компоненты готовят по определенной методике.
Техника постановки реакции очень сложна и требует специально оборудованной лаборатории и высокой квалификации исследователя.
Занятие 19. Техника серологических исследований
Цель занятия. Ознакомить студентов с основными 'методами проведения серологических исследований, а также с техникой взятия крови у животных, упаковкой и пересылкой ее в лабораторию, с техникой получения необходимых компонентов и постановкой реакций: агглютинации, преципитации и связывания комплемента.

Лечебные ванны применяют чаще для овец, причем только в теплое время или при наличии утепленных помещений. Рекомендуют креолиновую и лизоловую ванны. Для креолиновой ванны на каждые 100 л подогретой до 40° воды берут 2,5 кг креолина; продолжительность купки 2—2,5 мин. Лизоловую ванну готовят так же, как и креолиновую, но на 100 л воды берут 2 кг лизола; продолжительность купки 1,5—2 мин. Используют также серноизвестковую ванну, сернонатриевую, табачную и т.

Кровотечение уменьшается при надавливании на вену ниже ее перерезки.
Окончательно кровотечение останавливают наложением на сосуд лигатуры. На кожную рану накладывают узловатый шов.
Занятие 3. Патологически© изменения в тканях -(атрофия/ дастрофня, некроз, гипертрофия, воспаление)
Цель занятия. Ознакомить студентов с патологическими процессами и способами их распознавания.
Материалы и оборудование.

В день дегельминтизации разовую норму корма уменьшают наполовину или одну треть. Установленное количество препарата смешивают сначала с небольшим количеством корма, а затем с оставшимся кормом, слегка увлажнив его водой; поросятам для сдабривания используют молочную сыворотку или мясной отвар. Больных поросят с плохим аппетитом дегельминтизируют небольшими группами (не более 30 животных). При наличии в хозяйстве лечебных комбикормов с солями пиперазина (15 кг/т корма) их назначают в дозе 40 г/кг, но не более 2 кг на каждое животное и скармливают в течение одного дня вместо обычного корма в сухом, увлажненном или запаренном виде.

При исследовании яремных вен обращают внимание на их пульсацию. Различают положительный и отрицательный венный пульс. Яремную вену сдавливают большим пальцем руки. При отрицательном венном пульсе в нижней части яремного желоба от давления пальца пульсация вены тотчас прекращается/Ясно выраженная пульсация вены после сдавливания ее пальцем наблюдается при положительном венном пульсе.
Исследование сердца начинают с осмотра и пальпации сердечной области.

После этого раствор опять перемешивают. В результате получается концентрированный раствор, из которого и готовят перед "употреблением (перед купкой животных) рабочий раствор. Для этого на каждые 97,5 л воды берут 2,5 части' приготовленного вышеуказанным способом концентрированного раствора гексахлорана. В результате получается водная эмульсия, содержащая 0,25% гексахлорана и'1% креолина.
Уничтожение клещей в помещениях.

Поэтому первый тон всегда следует за длинной паузой, а второй—за короткой.
. Тоны сердца более ясно выслушиваются ближе к месту их возникновения, в так называемых пунктах их лучшей слышимости." Точки лучшей слышимости сердечных тонов у коровы: 1) в четвертом межреберье слева на 2—3 пальца ниже уровня лопаткоплечевого сустава прослушивают двухстворчатый клапан; 2) в третьем межреберье той же стороны и на 3—4 пальца ниже уровня лопаткоплечевого сустава — полулунные клапаны легочной артерии; 3) в четвертом межреберье — полулунные клапаны аорты; 4) в четвертом межреберье на 2—3 пальца ниже уровня лопаткоплечевого сустава правой конечности — трехстворчатый клапан сердца.

Заднюю границу сердца определяют последовательной перкуссией в межреберных промежутках по линии от наружного бугра подвздошной кости к локтевому бугру левой конечности. Задняя граница сердца у здоровых животных лежит до шестого ребра, у собак—до седьмого. Верхняя граница у крупного рогатого скота находится на уровне лопаткоплечевого сустава, у лошадей на два пальца ниже лопаткоплечевого сочленения.

От донора кровь берут из яремной вены в стерильный сосуд; свертывание крови предупреждают добавлением к ней стабилизатора (3%-ный раствор цитрата натрия). Кровь, как и лекарственные растворы, вводят медленно.
- 6. Аутогемртерапия — метод неспецифического лечения собственной кровью больного. В стерильный шприц из вены больного животного набирают кровь и тут же вводят ее подкожно или внутримышечно. Дозы крупным животным- 20—150 мл, мелким—1—10 мл.

Животных можно направлять на убой через 60 дней после обработки трихлорметафосом-3.: :-'
Карбофос — бесцветная или слегка желтоватого цвета маслянистая жидкость- с характерным запахом, хорошо растворяется в органических растворителях, слабо—: в воде. Технический карбофос — темно-коричневая жидкость с неприятным запахом. Препарат выпускают в форме 30%-ного и 50%-ного концентратов эмульсий; 25%-ного смачиваемого порошка и 4%-ного дуста.

Кровь берут из верхушки уха, хвоста у мелких животных, из гребня и подкрыльцовой вены—-у птиц.
На месте взятия крови выстригают или выбривают шерсть, кожу тщательно протирают ватным тампоном, смоченным спиртом или эфиром, после чего делают укол простерилизоваиной иглой или'скальпелем.
Техника приготовления мазков крови заключается в-следующем. Первую каплю крови удаляют ватным тампоном, а следующую наносят на чистое, обезжиренное, сухое предметное стекло.

Материалы, оборудование, животные. Станки для фиксации животных, привязь, ремень для повала, веревки, путки, закрутки. Набор хирургических инструментов, перчатки резиновые, жгут, перевязочные и шовные материалы, дезинфицирующие вещества. Корова, овца, свинья, лошадь.
Методика проведения занятия. Занятие проводят в ветеринарной лечебнице с использованием больных и подопытных животных. Под руководством преподавателя студенты определяют состояние больных животных и характер повреждений.

Стерилизация шприцев. Шприцы стерилизуют в разобранном виде. Цилиндр шприца завертывают в марлю и .размещают в' стерилизаторе отдельно от поршня.; Стерилизатор заполняют холодной водой так, чтобы все части шприца находились в жидкости. Стерилизатор закрывают крышкой и приступают к кипячению. Начало процесса стерилизации отмечают с момента закипания
"Жидкости. Стерилизуют в течение 15—20 мин. После кипячения шприцы должны оставаться в воде до полного их охлаждения.

Лоток с инструментами погружают в кипящую воду. Начало процесса стерилизации отмечают с момента вторичного закипания жидкости. Надежной стерилизации достигают беспрерывным кипячением с закры-
той крышкой стерилизатора в течение 10—15 мин, с от-
жрытой крышкой — 30—45 мин. После стерилизации воду из коробки стерилизатора выливают, лоток извлекают с помощью крючьев, и инструменты раскладывают на сте-
"рильный простыне.

Ооцисты очень устойчивы к химическим веществам и крайне неустойчивы к высокой температуре, (быстро погибают при .температуре 80—100°). При термообработке необходимо учитывать, что ооцисты кокцидий после попадания во внешнюю среду становятся заразными только спустя 48—72 ч. Для этой цели можно использовать пламя паяльной лампы, а также струю горячего воздуха.
В благополучных по кокцидиозу хозяйствах обработку помещений, оборудования и вольер нужно проводить один .

Люди, которым поручается работа по механической очистке, должны быть проинструктированы в вопросах личной профилактики. Их необходимо обеспечить соответствующей спецодеждой (халат с капюшоном, сшитый из плотной .материи, резиновые перчатки и сапоги).
После механической очистки приступают к собственно дезинфекции — воздействию дезинфицирующими средствами, которые подразделяют на физические и химические.

молоком после 16— 18-часовой голодной диеты. После дачи препарата животных содержат на привязи в течение 24 ч.
При цестодозах птицы применяют следующие препараты:
а) ареколин в виде сухого порошка для гусей назначают в дозе 0,001—0,015 г/кг, а для кур 0,003 г/кг в растворе (1 :1000);
б) камалу применяют для птиц при индивидуальном скармливании 1—2 г/кг, при групповом скармливания 0,3 г/кг вместе с мешанкой из отрубей, дерти и других кормов; Перед дачей препарата назначают 12-часовую голодную диету;
в) обезжиренную кашу из семян тыквы скармливают групповым методом при дрепанидотениозе гусей.